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发布时间:2021-11-05 06:35:27
细胞冻存的操作步骤
1. 配制含10%DMSO或甘油、10~20%小牛血的冻存培养液;
2. 取对数生长期的细胞,去除旧培养液,用PBS清洗。
3. 去除PBS,加入适量胰蛋白酶(覆盖培养皿表面)把单层生长的细胞消化下来;
4. 离心1000rpm,5min;
5. 去除胰蛋白酶,加入适量配制好的冻存培养液,用吸管轻轻吹打使细胞均匀,计数,调节冻存液中细胞的密度为5×106/ml~1×107/ml;
6. 将细胞分装入冻存管中,每管1~1.5 ml;
7. 在冻存管上标明细胞的名称,冻存时间及操作者;
8. 冻存:标准的冻存程序为降温速率-1~-2℃/ min;当温度达-25℃以下时,可增至-5℃~-10℃/min;到-100℃时,则可迅速浸入液氮中。也可将装有细胞的冻存管放入-20℃冰箱2h ,然后放入-70℃冰箱中过夜,取出冻存管,移入液氮容器内。
细胞冻存步骤
1.用移液器吸走原培养基,加入适量PBS洗1-2遍;
2.加入适量胰酶,置于培养箱中消化;
3.待消化到位后加入适量血浆或完全培养基终止消化,800-1000rpm离心3-5min;
4.配制冻存液,待细胞离心后去上清,加入冻存液重悬,调整细胞浓度为3×106~1×107 cells/mL,转移到冻存管中;
5.将冻存管放入程序降温盒中,-80度过夜,然后转移到液氮中保存。
6.冻存细胞后应取出一管复苏,检测细胞的存活率。理论上细胞可在液氮内长期保存,
为稳妥起见可在细胞冻存半年后复苏培养,观察细胞生长情况,再继续冻存
冻存袋细胞复苏操作步骤
1.操作人员应戴防护面罩及手套,防止冷冻管可能爆裂之伤害。
2.自液氮或干冰容器中取出冷冻管,检查盖子是否旋紧,由于热胀冷缩过程,此时盖子易松掉。
3.将新鲜培养基置于37℃水槽中回温,回温后喷以70酒精并擦拭之,移入无菌操作台内。
4.取出冷冻管,立即放入3℃水槽中快速解冻,轻摇冷冻管使其在1分钟内全部融化,以7O%酒精擦拭保存管外部,移入无菌操作台内。
5.取出解冻之细胞悬浮液,缓缓加入有培养基之培养容器内(稀释比例为1:10~1:15),混合均匀,放入培养箱培养。取0.1m1解冻细胞悬浮液作存活测试。
6.解冻后是否立即去除冷冻保护剂,依细胞种类而异,一般而言,大都不需要立即去除冷冻保护剂。惟若要立即去除,则将解冻之细胞悬浮液加入含有5-10m1培养基之离心管内,离心 1000rpm,5分钟,移去上清液,加入新鲜培养基,混合均匀,放入培养箱培养。
冻存袋介绍
细胞冻存是将细胞放在低温环境,减少细胞代谢,以便长期储存的一种技术。细胞冻存是细胞保存的主要方法之一,起到了细胞保种的作用。连续培养的细胞系容易发生遗传漂变,有限细胞系终会发生***,所有培养的细胞都易受到微生物污染。已建立的细胞系是一种宝贵资源,更换细胞系成本高昂,而且耗费时间。可以利用细胞冻存的形式来购买、寄赠、交换和运送某些细胞。
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