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发布时间:2021-11-20 04:15:40
细胞冻存袋方法
1、消化细胞(同实验二),将细胞悬液收集至离心管中。
2、1000rpm离心10分钟,弃上清液。
3、沉淀加含保护液的培养,计数,调整至5×106/ml左右。
4、将悬液分至冻存管中,每管1 ml。
5、将冻存管口封严。如用安瓿瓶则火焰封口,封口一定要严,否则复苏时易出现爆裂。
6、贴上标签,写明细胞种类,冻存日期。冻存管外拴一金属重物和一细绳。
7、按下列顺序降温:室温→4℃(20分钟)→冰箱冷冻室(30分钟)→低温冰箱(-30℃ 1小时)→气态氮(30分钟)→液氮。
注意:操作时应小心,以免液氮。液氮定期检查,随时补充,不能挥发干净,一般30立升的液氮能用1~1.5月。
细胞冻存离心问题
目前主要有两种见解。一种是解冻后的细胞悬液直接吹打均匀后分装到培养瓶中进行培养,第二天换液。因为离心的目的是两个,去除 DMSO,去除死细胞,这个是标准流程,但对一般人来说,把握不好离心转速和时间,转的不够沉底的少,细胞就全被扔掉了,转过了会受压过大, 。此外在操作过程中容易污染,所以不推荐。另一种说法为细胞悬液中含有二亚砜(DMSO),DMSO对细胞有一定的毒***,所以须将离心后的液 体前倒净,且一定倒干净。我在试验中按照常规的离心分装的方法进行复苏,结果无有异常。
冻存袋操作流程
(1)冰冻当天进入***局域网,查询当日***间冰冻安排表,大致了解当日的冰冻情况,并提前通知当日负责冰冻送片的初检医生,避免遗漏。
(2)取材前确定标本冰冻报告已发出,核对标本病理号、住院号,准确记录其病理号、住院号、姓名(至少有其中2项)于冻存***登记本上。
(3)在新鲜标本取材台上取材,并使用取材器具,同一天使用频繁时,每取完一例标本器具应清洗后浸泡于消毒液中,以防止其他标本污染。
(4)在不影响外检取材的前提下,充分取材。良变取足够量病灶,病变取足够量病灶及***旁正常***(***旁正常***远离病灶应尽量>2cm)。
(5)将所取标本切割成直径1~2mm的***块,不同标本及同一标本不同部位装入相应冻存管中,做好标记(注意顺序,切取标本、夹放冻存管都应遵循“先正常-后”的顺序,避免***污染)。
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